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透射電鏡

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透射電鏡

透射電子顯微鏡(Transmission Electron Microscope ,簡稱TEM),可以看到光學(xué)顯微鏡下無法看清的小于0.2um的細(xì)微結(jié)構(gòu),這些結(jié)構(gòu)稱為亞顯微結(jié)構(gòu)或超微結(jié)構(gòu)。要想看清這些結(jié)構(gòu),就必須選擇波長更短的光源,以提高顯微鏡的分辨率。1932年Ruska發(fā)明了以電子束為光源的透射電子顯微鏡,電子束的波長要比可見光和紫外光短得多,并且電子束的波長與發(fā)射電子束的電壓平方根成反比,也就是說電壓越高波長越短。目前TEM的分辨力可達(dá)0.2nm。

掃描電鏡(SEM)和透射電鏡(TEM)的區(qū)別:

高分辨的透射電子顯微鏡常用于觀察普通顯微鏡不能分辨的細(xì)致物質(zhì)結(jié)構(gòu),掃描電子顯微鏡主要用于觀察固體表面的形鏡。有時,將兩者有機(jī)結(jié)合可以得到比較全面的材料分析結(jié)果。下面將從多方面比較,細(xì)致掃描電鏡和透射電鏡的區(qū)別。

透射電鏡

晶體結(jié)構(gòu)可以通過高分辨率透射電子顯微鏡來研究,這種技術(shù)也被稱為相襯顯微技術(shù)。當(dāng)使用場發(fā)射電子源的時候,觀測圖像通過由電子與樣品相互作用導(dǎo)致的電子波相位的差別重構(gòu)得出,然而由于圖像還依賴于射在屏幕上的電子的數(shù)量,對相襯圖像的識別更加復(fù)雜。

非晶樣品透射電子顯微圖像襯度是由于樣品不同微區(qū)間存在的原子序數(shù)或厚度的差異而形成得到,即質(zhì)量厚度襯度,也叫質(zhì)厚襯度。質(zhì)厚襯度適用于對復(fù)型膜試樣電子圖象作出解釋。質(zhì)量厚度數(shù)值較大的,對電子的吸收散射作用強(qiáng),使電子散射到光欄以外的要多,對應(yīng)較安的襯度。質(zhì)量厚度數(shù)值小的,對應(yīng)較亮的襯度。

1.腦組織取材及應(yīng)用

腦組織取材法:在一般情況下,腦組織先進(jìn)行灌注固定(4%多聚甲醛溶液),待固定完成后應(yīng)馬上打開顱骨,暴露出所要取材的位置,根據(jù)取材的要求以及實(shí)驗(yàn)?zāi)康母钊∠鄳?yīng)的部位,如研究腦神經(jīng)軸索、髓鞘以及神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞,建議取材于腦組織白質(zhì)部分,此處有髓神經(jīng)纖維相對較多,膠質(zhì)細(xì)胞比較非富;如要研究神經(jīng)元以及血腦屏障結(jié)構(gòu),建議取材于腦皮質(zhì)的灰質(zhì)部分,而且最好做定向包埋,以神經(jīng)元長軸方向(大約為腦組織的矢狀面)作為切面方向,這樣可以很好的觀察神經(jīng)元細(xì)胞核、軸突以及樹突結(jié)構(gòu)的變化,突觸以及毛細(xì)血管的結(jié)構(gòu)也比較容易見到。

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圖:暴露于AgNP的動物腦組織的代表性TEM顯微照片RER(箭頭)和擴(kuò)大的高爾基體復(fù)合體(G)的腫脹碎片。

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圖:自噬抑制劑對腦組織的亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)具有保護(hù)作用。采用透射電子顯微京(TEM)觀察小鼠腦組織亞腦細(xì)胞結(jié)構(gòu)的病理變化。在JEV+Rapa和JEV組觀察到腦組織線粒體嚴(yán)重?fù)p傷,在JEV+Wort和JEV+CQ組觀察到腦組織線粒體輕微損傷(紅色箭頭,線粒體;比例尺,2um)

2.睪丸及附睪組織取材及應(yīng)用

睪丸及附睪組織取材方法:由于睪丸組織比較松散,固定難度較大,目前大多采取灌注固定法進(jìn)行固定,但此方法如果處理不當(dāng),很可能會造成固定不良,原因是睪丸的血供離心臟比較遠(yuǎn),固定液難以到達(dá),睪丸曲細(xì)精管基膜比較厚,固定液難以滲透,導(dǎo)致固定不良。我們還可以采用注射固定法即用注射針直接插入睪丸內(nèi)部,從多個方向進(jìn)行注射固定液,然后割取觀察部位進(jìn)行進(jìn)一步浸泡固定;另一種方法就是直接割取觀察部位進(jìn)行浸泡固定的,需要注意的是,取材的睪丸組織必須切的很細(xì),讓固定液直接滲透入曲精細(xì)管的斷面,這樣,各層生殖細(xì)胞都會得到很好的固定,不過比較麻煩的就是每次操作的都要離心處理。另外需要注意的是,要觀察生精細(xì)胞,必須取材于睪丸的睪丸網(wǎng)部位,如果取材于直精小管部位,就看不到生精細(xì)胞了,大鼠與小鼠睪丸網(wǎng)比較表淺,就在白膜下附近。如果要觀察成熟精子,最好取材于附睪的尾部,此處精子已基本成熟,而且精子密度最高。

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圖:附睪Prm1缺陷精子染色質(zhì)濃縮和ROS誘導(dǎo)的DNA損傷分析。(A)Prm1+/+、和Prm1-/-附睪精子的代表性透射電子顯微照片。(B)來自Prm1+/+、Prm1+/-和Prm1-/-雄性(n=3)的附睪精子DNA濃縮的定量;對每名男子100個精子進(jìn)行了分析。(C)Prm1-/-附睪精子的透射電子顯微照片。(D)載有從Prm1+/-、Prm1-/-、Prm2+/-、Prm2-/-和通過電泳分離的WT雄性附睪精子分離的基因組DNA的瓊脂糖凝膠。載有梯子(L)的其他車道已從圖像中剪下。(E)8-OHdG陽性精子在Prm1+/+、+Prm1+/-、Prm1-/-,小鼠(n=3)的附睪頭和尾部組織切片上的百分比。(F)來自Prm1+/+、Prm1+/-、Prm1-/-雄性的睪丸、附睪頭和附睪尾組織切片中針對8-OHdG的代表性IF染色。

3.骨組織取材及應(yīng)用

腎外包被一層薄膜,主要由纖維組織和少量平滑肌組成。一般腎標(biāo)本取材部位在腎實(shí)質(zhì),實(shí)質(zhì)由皮質(zhì)與髓質(zhì)兩部分組成,一般取材部分在腎皮質(zhì),皮質(zhì)位于腎的外周,其厚度因動物種類不同而有差異,一般在1mm-4mm。腎組織除了采取灌注固定外,直接浸泡固定的效果也是比較滿意。腎組織取材相對比較簡單,一般臨床上采用穿刺術(shù),然后根據(jù)需要切取皮質(zhì)或髓質(zhì)進(jìn)行觀察。

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圖:BSHX減輕腎臟的組織病理學(xué)和超微結(jié)構(gòu)病理學(xué)。(A)腎臟外觀和大小的初步觀察。(B)腎臟的蘇木精和伊紅(HE)染色(X400)。(C)高碘酸希夫(PAS)腎臟染色(x400)。(D)腎臟透射電子顯微鏡(比例尺,2um)。(E)腎臟透射電子顯微鏡(比例尺,500nm)。


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